Гистологическое сравнение липофилинга и препарата на основе гиалуроновой кислоты после введения крысам через 30 дней

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Проведено гистологическое сравнение липофилинга и препарата на основе гиалуроновой кислоты у крыс. В эксперименте на крысах на гистологическом уровне показано, что применение трансплантации аутожира приводит к более равномерному распределению жировой ткани на сроке 30 дней, уменьшению площади сальных желез при липофилинге, по сравнению с препаратом на основе гиалуроновой кислоты. Гиалуроновые филлеры способствуют увеличению толщины клеточного эпидермиса, в том числе и за счет увеличения толщины зернистого слоя, толщины дермы и самого филлера в подкожном пространстве, по сравнению с липофилингом.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Э. А. Лаврентьева

ФГАОУ ВО Российский Университет дружбы народов им. П. Лумумбы

Автор, ответственный за переписку.
Email: laveelina@ya.ru
Россия, Москва

М. В. Хлысталов

ФГАОУ ВО Российский Университет дружбы народов им. П. Лумумбы

Email: laveelina@ya.ru
Россия, Москва

С. Е. Мороз

ФГАОУ ВО Российский Университет дружбы народов им. П. Лумумбы

Email: laveelina@ya.ru
Россия, Москва

О. С. Ходорович

ФГАОУ ВО Российский Университет дружбы народов им. П. Лумумбы; Российский научный центр рентгенорадиологии

Email: laveelina@ya.ru
Россия, Москва; Москва

А. Г. Королев

ФГАОУ ВО Российский Университет дружбы народов им. П. Лумумбы; МГУ им. М.В. Ломоносова

Email: laveelina@ya.ru
Россия, Москва; Москва

С. С. Ибадуллаева

ФГАОУ ВО Российский Университет дружбы народов им. П. Лумумбы

Email: laveelina@ya.ru
Россия, Москва

И. В. Кастыро

ФГАОУ ВО Российский Университет дружбы народов им. П. Лумумбы

Email: laveelina@ya.ru
Россия, Москва

А. Ф. Карташева

ФГАОУ ВО Российский Университет дружбы народов им. П. Лумумбы

Email: laveelina@ya.ru
Россия, Москва

И. Б. Ганьшин

ФГАОУ ВО Российский Университет дружбы народов им. П. Лумумбы

Email: laveelina@ya.ru
Россия, Москва

М. И. Баранник

ФГАОУ ВО Российский Университет дружбы народов им. П. Лумумбы

Email: laveelina@ya.ru
Россия, Москва

П. В. Сарыгин

ФГАОУ ВО Российский Университет дружбы народов им. П. Лумумбы

Email: laveelina@ya.ru
Россия, Москва

А. Н. Иноземцев

ФГАОУ ВО Российский Университет дружбы народов им. П. Лумумбы; МГУ им. М.В. Ломоносова

Email: laveelina@ya.ru
Россия, Москва; Москва

Список литературы

  1. Sinelnikov M.E., Babaeva J.V., Startseva O.I., Burdin S.A. Acute vascular complications after facial contouring. Mechanisms of development, methods of prevention and treatment // Golova i sheya. Rossijskij zhurnal Head and neck Russian Journal. 2020; 8(1):63–68.
  2. Startseva O.I., Guryanov R.A., Mahmud K.V., Zabolotnaya E.N. Three-dimensional analysis of the results of endoscopic eyebrows lift // Head and neck Russian Journal. 2020;8(1):15–21.
  3. Bora P., Majumdar A.S. Adipose tissue-derived stromal vascular fraction in regenerative medicine: a brief review on biology and translation // Stem Cell Res Ther. 2017; 8 (1): 145.
  4. Dragunova S.G., Reshetov I.V., Kosyreva T.F., Severin A.E., Khamidulin G.V., Shmaevsky P.E., Inozemtsev A.N., Popadyuk V.I., Kastyro I.V., Yudin D.K., Yunusov T.Yu., Kleyman V.K., Bagdasaryan V.V., Alieva S.I., Chudov R.V., Kuznetsov N.D., Pinigina I.V., Skopich A.A., Kostyaeva M.G. Comparison of the Effects of Septoplasty and Sinus Lifting Simulation in Rats on Changes in Heart Rate Variability // Doklady Biochemistry and Biophysics. 2021; 498: 165–169.
  5. Dolgalev Al., Svyatoslavov D.S., Pout V.A., Reshetov I.V., Kastyro I.V. Effectiveness of the Sequential Use of Plastic and Titanium Implants for Experimental Replacement of the Mandibular Defect in Animals using Preliminary Digital Design // Doklady Biochemistry and Biophysics. 2021; 496: 36–39.
  6. Kastyro I.V., Mikhalskaia P.V., Khamidulin G.V., Kostyaeva M.G., Tsymbal A.A., Shilin S.S., Popadyuk V.I., Pavluk-Pavluchenko L.L., Minasyan P.N., Markushin A.A., Ganshin I.B. Expression of the P53 Protein and Morphological Changes in Neurons in the Pyramidal Layer of the Hippocampus After Simulation of Surgical Interventions in the Nasal Cavity in Rats // Cell Physiol Biochem. 2023; 57 (1): 23–33.
  7. Kastyro I.V., Khamidulin G.V., Dyachenko Yu.E., Kostyaeva M.G., Tsymbal A.A., Shilin S.S., Popadyuk V.I., Mikhalskaya P.V., Ganshin I.B. Analysis of p53 protein expression and formation of dark neurons in the hippocampus of rats during septoplasty modeling // Russian Rhinology. 2023; 31 (1): 27–36.
  8. Nashwan A.K., Markushin A.A., Kastyro I.V., Gordeev D.V., Timoshemko A.V., Popadyuk V.I., Ganshin I.B. Comparison of the degree of algogenicity of rhinoplasty, septoplasty and rhinoseptoplasty // Head and neck. Russian Journal. 2023;11(4):17–24.
  9. Matoltsy A.G. Desmosomes, filaments, and keratohyaline granules: their role in the stabilization and keratinization of the epidermis // J Invest Dermatol. 1975; 65 (1): 127–42.
  10. Alibardi L., Toni M. Cytochemical, biochemical and molecular aspects of the process of keratinization in the epidermis of reptilian scales // Prog Histochem Cytochem. 2006; 40(2):73–134.
  11. Hoober J.K., Eggink L.L. The Discovery and Function of Filaggrin // Int J Mol Sci. 2022; 23 (3): 1455.
  12. Nadra K., André M., Marchaud E., Kestemont P., Braccini F., Cartier H., Kéophiphath M., Fanian F. A hyaluronic acid-based filler reduces lipolysis in human mature adipocytes and maintains adherence and lipid accumulation of long-term differentiated human preadipocytes // J Cosmet Dermatol. 2021; 20 (5): 1474–1482.
  13. Ehlinger-David A., Gorj M., Braccini F., Loreto F., Grand-Vincent A., Garcia P. A prospective multicenter clinical trial evaluating the efficacy and safety of a hyaluronic acid-based filler with Tri-Hyal technology in the treatment of lips and the perioral area // J Cosmet Dermatol. 2023; 22 (2): 464–472.
  14. Goncharov E.N., Koval O.A., Bezuglov E. Stromal Vascular Fraction Therapy for Knee Osteoarthritis: A Systematic Review. // Medicina (Kaunas). 2023; 59 (12): 2090.
  15. Gandolfi S., Pileyre B., Drouot L., Dubus I., Auquit-Auckbur I., Martinet J. Stromal vascular fraction in the treatment of myositis. // Cell Death Discov. 2023; 9 (1): 346.
  16. Marinho A., Nunes C., Reis S. Hyaluronic Acid: A Key Ingredient in the Therapy of Inflammation. // Biomolecules. 2021; 11 (10):1518.
  17. Wu G.T., Kam J., Bloom J.D. Hyaluronic Acid Basics and Rheology. // Clin Plast Surg. 2023; 50 (3): 391–398.
  18. Klinger M., Caviggioli F., Klinger F.M., Giannasi S., Bandi V., Banzatti B., Forcellini D., Maione L., Catania B., Vinci V. Autologous fat graft in scar treatment // J Craniofac Surg. 2013; 24 (5): 1610–5.
  19. Xie Y., Cheng C., Li Q. Commen on Autologous fat graft in scar treatment // J Craniofac Surg. 2014; 25(2):726.
  20. Klinger F., Maione L., Vinci V., Lisa A., Barbera F., Balia L., Caviggioli F., Di Maria A. Autologous fat graft in irradiated orbit postenucleation for retinoblastoma // Orbit. 2018; 37 (5): 344–347.
  21. Klingenstein A., Garip-Kuebler A., Muth D.R., Hintschich C. A prospective randomized pilot study evaluating the scar outcome after gluteal dermis fat graft with and without kinesiotaping // Int Ophthalmol. 2022; 42 (8): 2563–2571.
  22. Le J.M., Bosworth J.W., Honeywell B., Ananthasekar S., Collawn S.S. Adipose Grafting for Volume and Scar Release // Ann Plast Surg. 2021; 86 (6S Suppl 5): S487–S490.
  23. Salwowska N.M., Bebenek K.A., Żądło D.A., Wcisło-Dziadecka D.L. Physiochemical properties and application of hyaluronic acid: a systematic review // J Cosmet Dermatol. 2016; 15 (4): 520–526.
  24. Tabassum N., Chowdary Jasthi V., Al Salem A., Kumar S.M. Perspectives and challenges in lip rejuvenation: a systematic review // Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2023; 27 (19): 9043–9049.
  25. Ciccone V., Zazzetta M., Morbidelli L. Comparison of the Effect of Two Hyaluronic Acid Preparations on Fibroblast and Endothelial Cell Functions Related to Angiogenesis // Cells. 2019; 8(12):1479.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Группа ЛФ (30 дней). А) Дерма и гиподерма. Красными стрелками указано диффузное распределение жировой ткани аутотрансплантата. Окраска по Маллори. Ув. х 100. Б) Жировая ткань в месте имплантации, прослойки рыхлой соединительной ткани с сосудами микроциркуляторного русла (синяя стрелка), вариабельные по размеру жировые клетки (красная стрелка). Окраска гематоксилином и эозином. Ув. х 200.

Скачать (442KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Группа ФГК (30 дней). А) Эпидермис обозначен красной стрелкой, дерма – синей стрелкой, гель – желтыми стрелками. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. х 50. Б) Полости в дерме, образованные при имплантации геля на основе гиалуроновой кислоты. Коллагеновые волокна дермы обозначены синими стрелками, а полости, образованные гелем, – желтой стрелкой. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. х 100. В) Распределение геля в гиподерме. Жировые клетки обозначены черными стрелками, гель – желтыми стрелками, венула – зеленой стрелкой. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. х 200. Г) Распределение геля между дермой и гиподермой. Жировые клетки обозначены черными стрелками, гель указан желтыми стрелками. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. х 200.

Скачать (857KB)
Метаданные

© Российская академия наук, 2025