Получение активных аминогрупп на поверхности полиэтилентерефталатной пленки и их количественная оценка для технологии биологических микрочипов

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Разработан метод получения активных аминогрупп на поверхности подложки из полиэтилентерефталата (ПЭТ). Разработан метод количественной оценки концентрации и распределения химически доступных аминогрупп на поверхности ПЭТ-подложки с использованием цианинового красителя Cy5 и цифровой флуоресцентной микроскопии. Аминогpуппы могут быть использованы для дальнейшей xимичеcкой модификации поверхности ПЭТ, прививки различных функциональных групп и ковалентного cвязывания c биомолекулами, что открывает перспективы широкого использования недорогого ПЭТ в качестве функциональных подложек в биочипах, биосенсорах, устройствах “лаборатория на чипе” и других биотехнологических приложениях.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Г. Ф. Штылев

ФГБУН “Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта” РАН (ИМБ РАН)

Email: chud@eimb.ru
Россия, 119991 Москва, ул. Вавилова, 32

И. Ю. Шишкин

ФГБУН “Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта” РАН (ИМБ РАН)

Email: chud@eimb.ru
Россия, 119991 Москва, ул. Вавилова, 32

С. А. Лапа

ФГБУН “Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта” РАН (ИМБ РАН)

Email: chud@eimb.ru
Россия, 119991 Москва, ул. Вавилова, 32

В. Е. Шершов

ФГБУН “Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта” РАН (ИМБ РАН)

Email: chud@eimb.ru
Россия, 119991 Москва, ул. Вавилова, 32

В. Е. Барский

ФГБУН “Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта” РАН (ИМБ РАН)

Email: chud@eimb.ru
Россия, 119991 Москва, ул. Вавилова, 32

С. А. Поляков

ФГБУН “Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта” РАН (ИМБ РАН)

Email: chud@eimb.ru
Россия, 119991 Москва, ул. Вавилова, 32

В. А. Василисков

ФГБУН “Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта” РАН (ИМБ РАН)

Email: chud@eimb.ru
Россия, 119991 Москва, ул. Вавилова, 32

О. А. Заседателева

ФГБУН “Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта” РАН (ИМБ РАН)

Email: chud@eimb.ru
Россия, 119991 Москва, ул. Вавилова, 32

В. Е. Кузнецова

ФГБУН “Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта” РАН (ИМБ РАН)

Email: chud@eimb.ru
Россия, 119991 Москва, ул. Вавилова, 32

А. В. Чудинов

ФГБУН “Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта” РАН (ИМБ РАН)

Автор, ответственный за переписку.
Email: chud@eimb.ru
Россия, 119991 Москва, ул. Вавилова, 32

Список литературы

  1. Ahsan H. // Comp. Clin. Pathol. 2022. V. 31. P. 333– 345. https://doi.org/10.1007/s00580-021-03302-4
  2. Gnoth C., Johnson S. // Geburtshilfe Frauenheilkd. 2014. V. 74. P. 661–669. https://doi.org/10.1055/s-0034-1368589
  3. Mao X., Wang W., Du T.-E. // Sensors and Actuators B: Chemical. 2013. V. 186. P. 315320. https://doi.org/10.1016/j.snb.2013.05.083
  4. Rubina A.Yu., Pan’kov S.V., Dementieva E.I., Pen’kov D.N., Butygin A.V., Vasiliskov V.A., Chudinov A.V., Mikheikin A.L., Mikhailovich V.M., Mirzabekov A.D. // Anal. Biochem. 2004. V. 325. P. 92–106. https://doi.org/10.1016/j.ab.2003.10.010
  5. Gryadunov D., Dementieva E., Mikhailovich V., Nasedkina T., Rubina A., Savvateeva E., Fesenko E., Chudinov A., Zimenkov D., Kolchinsky A., Zasedatelev A. // Exp. Rev. Mol. Diagn. 2011. V. 11. P. 839–853. https://doi.org/10.1586/ERM.11.73
  6. Miller M.B., Tang Y.W. // Clin. Microbiol. 2009. V. 22. P. 611–633. https://doi.org/10.1128/CMR.00019-09
  7. Zhu H., Qian J. // Adv. Genet. 2012. V. 79. P. 123–155.
  8. Rother D., Sen T., East D., Bruce I.J. // Nanomedicine. 2011. V. 6. P. 281–300. https://doi.org/10.2217/nnm.10.159
  9. Akkoyun A., Bilitewski U. // Biosensors and Bioelectronics. 2002. V. 17. P. 655–664. https://doi.org/10.1016/S0956-5663(02)00029-5
  10. Tu Q., Wang J.-C., Zhang Y., Liu R., Liu W., Ren L., Shen S., Xu J., Zhao L., Wang J. // Rev. Anal. Chem. 2012. V. 31. P. 177–192. https://doi.org/10.1515/revac-2012-0016
  11. Hosseini S., Ibrahim F., Djordjevic I., Koolea L.H. // Analyst. 2014. V. 139. P. 2933–2943. https://doi.org/10.1039/c3an01789c
  12. Dimitrievska S., Maire M., Diaz-Quijada G.A., Robitaille L., Ajji A., Yahia L., Moreno M., Merhi Y., Rureau M. // Macromol. Biosci. 2011. V. 11. P. 493–502. https://doi.org/10.1002/mabi.201000390
  13. Miftakhov R.A., Lapa S.A., Shershov V.E., Zasedateleva O.A., Guseinov T.O., Spitsyn M.A., Kuznetsova V.E., Mamaev D.D., Lysov Yu.P., Barsky V.E., Timofeev E.N., Zasedatelev A.S., Chudinov A.V. // Biophysics. 2018. V. 63. P. 512–518. https://doi.org/10.1134/S0006350918040127
  14. Miftakhov R.A., Lapa S.A., Kuznetsova V.E., Zolotov A.M., Vasiliskov V.A., Shershov V.E., Surzhikov S.A., Zasedatelev A.S., Chudinov A.V. // Russ. J. Bioorg. Chem. 2021. V. 47. Р. 1345–1347. https://doi.org/10.1134/S1068162021060182
  15. Lapa S.A., Klochikhina E.S., Miftakhov R.A., Zasedatelev A.S., Chudinov A.V. // Russ. J. Bioorg. Chem. 2021. V. 47. P. 1122–1125. https://doi.org/10.1134/S1068162021050290
  16. Лапа С.А., Мифтахов Р.А., Клочихина Е.С., Аммур Ю.И., Благодатских С.А., Шершовa В.Е., Заседателев А.С., Чудинов А.В. // Мол. биология. 2021. Т. 55. С. 944–955. https://doi.org/10.1134/S0026893321040063
  17. Zubtsov D.A., Savvateeva E.N., Rubina A.Yu., Pan’kov S.V., Konovalova E.V., Moiseeva O.V., Chechetkin V.R., Zasedatelev A.S. // Anal. Biochem. 2007. V. 368. P. 205–213. https://doi.org/10.1016/j.ab.2007.04.040
  18. Zolotov A.M., Miftakhov R.A., Ikonnikova A.Y., Lapa S.A., Kuznetsova V.E., Vasiliskov V.A., Shershov V.E., Zasedatelev A.S., Nasedkina T.V., Chudinov A.V. // Russ. J. Bioorg. Chem. 2022. V. 48. Р. 858–863. https://doi.org/10.1134/S1068162022040203
  19. Rendl M., Bönisch A., Mader A., Schuh K., Prucker O., Brandstetter T., Rühe J. // Langmuir. 2011. V. 27. P. 6116–6123. https://doi.org/10.1021/la1050833
  20. Ma Y., Liu L., Yang W. // Polymer. 2011. V. 52. P. 4159– 4173. https://doi.org/10.1016/j.polymer.2011.07.027
  21. Miftakhov R.A., Ikonnikova A.Yu., Vasiliskov V.A., Lapa S.A., Levashova A.I., Kuznetsova V.E., Shershov V.E., Zasedatelev A.S., Nasedkina T.V., Chudinov A.V. // Russ. J. Bioorg. Chem. 2023. V. 49. P. 1143–1150. https://doi.org/10.1134/S1068162023050217
  22. Mueller M., Bandl C., Kern W. // Polumers. 2022. V. 14. P. 608. https://doi.org/10.3390/ polym14030608
  23. Bui L.N., Thompson M., McKeown N.B., Romaschin A.D., Kalman P.G. // Analyst. 1993. V. 118. P. 463–474.
  24. Avny Y., Rebenfeld L. // J. Appl. Polymer Sci. 1986. V. 32. P. 4009–4025.
  25. Bech L., Meylheuc T., Lepoittevin B., Roger P. // J. Polymer Science. Part A: Polymer Chem. 2007. V. 45. P. 2172–2183. https://doi.org/10.1002/pola.21983
  26. Spitsyn M.A., Kuznetsova V.E., Shershov V.E., Emelyanova M.A., Guseinov T.O., Lapa S.A., Nasedkina T.V., Zasedatelev A.S., Chudinov A.V. // Dyes and Pigments. 2017. V. 147. P. 199–210. https://doi.org/10.1016/j.dyepig.2017.07.052
  27. Lysov Y., Barsky V., Urasov D., Urasov R., Cherepanov A., Mamaev D., Yegorov Y., Chudinov A., Surzhikov S., Rubina A., Smoldovskaya O., Zasedatelev A. // Biomed. Optics Express. 2017. V. 8. P. 4798–4810. https://doi.org/10.1364/BOE.8.004798
  28. Barsky V., Perov A., Tokalov S., Chudinov A., Kreindlin E., Sharonov A., Kotova E., Mirzabekov A. // J. Biomol. Screening. 2002. V. 7. P. 247–257. https://doi.org/10.1177/108705710200700308

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Схема химической модификации поверхности ПЭТ-пленки.

Скачать (71KB)
3. Рис. 2. Схема синтеза флуоресцентного красителя Cy5 и активированного производного пара-нитрофенилового эфира красителя Cy5-pNP.

Скачать (96KB)
4. Рис. 3. Микрофотография ПЭТ-подложки в свете флуоресценции красителя Cy5 после аминирования 10%-ным водным раствором этилендиамина в течение 8 ч при 70°С и связывания аминогрупп с флуоресцентным красителем Cy5-pNP. Показан график распределения сигналов вдоль проведенной линии на флуоресцентном изображении.

Скачать (304KB)

© Российская академия наук, 2024